• Главная
• Тесты НМО
• Тест с ответами по теме «Полимеразная цепная реакция»

Тест с ответами по теме «Полимеразная цепная реакция»

Вашему вниманию представляется Тест с ответами по теме «Полимеразная цепная реакция» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинских работников (врачи, медсестры и фармацевты). Тест с ответами по теме «Полимеразная цепная реакция» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинского персонала высшего и среднего звена (врачи, медицинские сестры и фармацевтические работники) позволяет успешнее подготовиться к итоговой аттестации и/или понять данную тему.

• тестирование
• итоговое
• предварительное
• Тест
• цепная
• теме
• с
• реакция
• Полимеразная
• по
• ответами
• нмо
• на
• медицинские

---

1. Амплификация – это

1) копирование ДНК;
2) разрезание нити ДНК;
3) усиление ферментативной активности;
4) ингибирование ферментативной активности.

2. Ассиметричная ПЦР проводится

1) когда необходимо амплифицировать преимущественно обе цепи исходной ДНК;
2) для уменьшения числа побочных продуктов реакции;
3) для увеличения числа побочных продуктов реакции;
4) когда необходимо амплифицировать преимущественно одну из цепей исходной ДНК.

3. В каких областях применяется ПЦР?

1) философия;
2) фармакогенетика;
3) криминалистика;
4) клиническая медицина.

4. В клинической медицине ПЦР используют для

1) прочтения последовательности РНК;
2) диагностики инфекционных заболеваний;
3) определения уровня ЛПВП в сыворотке крови;
4) определения аффинности белковых взаимодействий.

5. В состав реакционной смеси для проведения ПЦР входит

1) антитела;
2) манноза;
3) термостабильная ДНК-полимераза;
4) глюкоза.

6. Вложенная ПЦР применяется для

1) удешевления проведения ПЦР;
2) уменьшения числа побочных продуктов реакции;
3) обратимости реакции;
4) увеличения числа побочных продуктов реакции.

7. Во время отжига праймеров происходит

1) комплементарное взаимодействие праймера со специфичным участком;
2) ингибирование ДНК-полимеразы;
3) синтез комплементарной цепочки ДНК;
4) белок-белковое взаимодействие между ДНК-полимеразой и другими компонентами смеси.

8. Для проведения ПЦР с «горячим стартом» используют

1) меченые нуклеотиды;
2) ДНК-полимеразу, блокированную антителами;
3) минеральное масло;
4) меченые праймеры.

9. Для чего необходимо использование ионов магния в ПРЦ-реакции?

1) поддержание активности ДНК-полимеразы;
2) обеспечение ингибирования ДНК-полимеразы;
3) обеспечение отжига праймеров;
4) усиление взаимодействия между нуклеотидами.

10. К интеркалирующим красителям относят

1) PE;
2) аминофиллин;
3) SYBR Green I;
4) FITC.

11. К неспецифичной детекции в ПЦР в реальном времени относят

1) свободные меченые пробы;
2) праймеры-пробы;
3) интеркалирующие красители;
4) антитела.

12. К неспецифичным системам детекции можно отнести

1) FITC;
2) SYBR Green I;
3) PE;
4) SYBR Gold;
5) использование праймеров с флуоресцентными красителями.

13. К специфичным системам детекции относят

1) FITC;
2) аминофиллин;
3) свободные меченые пробы;
4) SYBR Green I.

14. Какой метод можно использовать для выявления мутаций?

1) проточную цитометрию;
2) динамометрию;
3) ПЦР;
4) ИФА.

15. Количественно оценить экспрессии гена позволяет метод

1) вложенная ПЦР;
2) ассиметричная ПЦР;
3) ПЦР с обратной транскрипцией;
4) секвенирование.

16. Необходимыми компонентами ПЦР-смеси являются

1) ДНК-матрица;
2) нуклеотиды;
3) ионы магния;
4) гемоглобин.

17. Области применения цифровой ПЦР

1) обнаружение химеризма;
2) обнаружение специфичных антител;
3) прочтение последовательности ДНК;
4) обнаружение специфичного белка в пробе.

18. Отличие репликации in vivo от амплификации

1) взаимодействие in vivo с антителами;
2) отсутствие ДНК-полимеразы;
3) более длинные фрагменты ДНК в амплификации;
4) более короткие фрагменты ДНК в амплификации.

19. ПЦР в реальном времени позволяет в отличии от ПЦР

1) определить специфичность праймеров;
2) точно количественно оценить копии ДНК в образце и детектировать в реальном времени;
3) обеспечить усиление комплементарного взаимодействия нуклеотидов;
4) определить длину целевого фрагмента ДНК.

20. ПЦР в реальном времени – это

1) метод оценки количества глюкозы в сыворотке крови;
2) чтение последовательности ДНК;
3) метод определения аффинности молекул;
4) метод, основанный на методе полимеразной цепной реакции, используется для одновременной амплификации и измерения количества данной молекулы ДНК.

21. ПЦР с использованием «горячего старта» проводят для

1) увеличения числа побочных продуктов реакции;
2) наработки белкового продукта;
3) уменьшения числа побочных продуктов реакции;
4) определения специфичности белка.

22. ПЦР с обратной транскрипцией в клинической практике используется для

1) определения титра антител;
2) поиска мутаций;
3) очищения белка;
4) диагностики вирусной инфекции.

23. ПЦР с обратной транскрипцией позволяет

1) обнаружить РНК-вирусы;
2) диагностировать химерные транскрипты;
3) оценить наличие белка в клетке;
4) оценить экспрессию генов.

24. ПЦР с обратной транскрипцией – это

1) чтение обратной последовательности ДНК;
2) метод амплификации специфического фрагмента рибонуклеиновой кислоты (РНК);
3) чтение прямой последовательности ДНК;
4) синтез белка с целевого фрагмента ДНК.

25. Полимеразная цепная реакция – это

1) экспериментальный метод молекулярной биологии, позволяющий добиться значительного увеличения малых концентраций определённых фрагментов нуклеиновой кислоты;
2) определение концентрации фармакологического препарата в сыворотке крови;
3) метод наработки белкового продукта в пробе;
4) определение силы связывания антиген-антитело.

26. Праймеры – это

1) олигонуклеотиды длиной около 20 н.о., подобранные на специфический участок ДНК, который необходимо копировать;
2) клетки, в которых происходит репликация;
3) белки, специфичные к участку ДНК;
4) антитела к ДНК-полимеразе.

27. Температура для денатурации составляет

1) 40-50 градусов;
2) 70-80 градусов;
3) 100 градусов;
4) 93-96 градусов.

28. Температура для отжига праймеров составляет

1) 30-35 градусов;
2) 93-96 градусов;
3) 40-75 градусов;
4) 10-20 градусов.

29. Температура элонгации составляет

1) 40-50 градусов;
2) 60-75 градусов;
3) 10-25 градусов;
4) 93-96 градусов.

30. Цифровая капельная ПЦР – это

1) чтение последовательности ДНК на чипе;
2) метод ПЦР, при котором реакционная смесь после добавления ДНК распыляется на множество мельчайших капель, попадающих на лунки чипа;
3) наработка преимущественно одноцепочечного продукта реакции;
4) проведение ПЦР с использованием 4 пар праймеров.

Специальности для предварительного и итогового тестирования:

Аллергология и иммунология, Клиническая лабораторная диагностика, Лечебное дело, Общая врачебная практика (семейная медицина), Педиатрия, Педиатрия (после специалитета), Терапия.

Ответы: Файлы с выделенными ответами вы можете получить в боте. Выбираете свою специальность и открываете доступ тут: Telegrаm

Если Вы уважаете наш труд и разделяете наши ценности (помощь медицинским работникам), если Вам хочется внести свой вклад в развитие нашего проекта, поддерживайте нас донатами: вносите свой посильный вклад в общее дело пожертвованиями и финансовой помощью. Чем больше у нас будет ресурсов, тем больше мы сделаем вместе для медицинских работников (Ваших коллег).

---