Тест с ответами на АТТЕСТАЦИЮ по теме «Гистология (СО) Первая категория: среднее профессиональное образование (для всех регионов)»
Вашему вниманию представляется Тест с ответами на АТТЕСТАЦИЮ по теме «Гистология (СО) Первая категория: среднее профессиональное образование (для всех регионов)» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинских работников (врачи, медсестры и фармацевты). Тест с ответами на АТТЕСТАЦИЮ по теме «Гистология (СО) Первая категория: среднее профессиональное образование (для всех регионов)» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинского персонала высшего и среднего звена (врачи, медицинские сестры и фармацевтические работники) позволяет успешнее подготовиться к итоговой аттестации и/или понять данную тему.
1. Какой метод не используется для окраски на бактерии:
1) шик-реакция;
2) по перлсу;
3) по пфейферу;
4) по леффлеру.
2. Гистологические структуры, воспринимающие основные красители, называют:
1) оксифильными;
2) базофильными;
3) нейтрофильными;
4) гематоксифильными.
3. Фиксировать ткань - это:
1) сохранить прижизненную структуру;
2) вызвать коагуляцию клеточного содержимого;
3) сделать ткань хрупкой, ломкой;
4) способствовать сморщиванию или набуханию ткани.
4. Пигмент, содержащий железо:
1) гемосидерин;
2) меланин;
3) реакция гримелиуса;
4) реакция перльса.
5. Результат окраски по Граму:
1) грамположительные бактерии – синего цвета;
2) амилоид – кирпично-красного цвета;
3) грамположительные бактерии – красно-оранжевые;
4) трехвалентное железо синего цвета.
6. Метод выявления кислых гликозоаминогликанов:
1) метод хейла;
2) метод косса;
3) метод браше;
4) метод фельгена.
7. Реактив для реакции выявления железа:
1) железистосинеродистый калий;
2) калий фосфорно-кислый;
3) гематоксилин и эозин;
4) реактив шиффа.
8. К микротомам не относится:
1) криостат;
2) санный;
3) замораживающий;
4) механически-ротационный.
9. Реактив для приготовления карболового фуксина Циля:
1) основной фуксин, серная кислота;
2) основной фуксин, нашатырный спирт;
3) основной фуксин, соляная кислота;
4) серная кислота.
10. Для определения бактериальной флоры и патогенных грибов не используется:
1) гематоксилин и эозин;
2) карболовый фуксин циля;
3) азур 11-эозин;
4) окраска метиленовым синим по леффлеру.
11. Для обезвоживания и просветления тканей необходимы:
1) этиловый спирт;
2) ацетон;
3) уксусная кислота;
4) вазелиновое масло.
12. Для приготовления абсолютного спирта необходимы:
1) медный купорос;
2) фенол;
3) желатин;
4) мел.
13. Эластичность парафину придает:
1) касторовое масло;
2) вазелиновое масло;
3) дибутилфталат;
4) воск.
14. Заражение медработника реально в случае:
1) проведение инъекций, пункций и др.манипуляций;
2) при проведение манипуляций у вич – инфицированного пациента;
3) во время операции – порез руки, попадание крови на слизистую глаза;
4) проведение операции без травмы.
15. Метод выявления железа в тканях:
1) метод косса;
2) импрегнация серебром;
3) окраска по перлсу;
4) окраска гематоксилин – эозином.
16. Пригодные срезы для выявления соединений железа
1) замороженные, парафиновые;
2) замороженные;
3) парафиновые;
4) не фиксированные.
17. Гематологические окраски:
1) циль-нильсен;
2) альциановый синий;
3) гематоксилин-эозин;
4) по романовскому-гимзе.
18. Наиболее частый вид эмболии
1) воздушная;
2) газовая;
3) жировая;
4) тромбоэмболия.
19. Для фиксации кусочков органов умерших от вич-инфекции применяют
1) 10 % формалин;
2) жидкость карнуа;
3) 96 % спирт;
4) все ответы верны.
20. Уничтожение патогенных для человека и животных микроорганизмов на объектах внешней среды с помощью химических веществ – это
1) дезинфекция;
2) асептика;
3) антисептика;
4) стерилизация.
21. Парафин и хлороформ для составления парафиновой каши берутся в соотношении
1) 1:3;
2) 1:1;
3) 1:10;
4) 1:20.
22. Преимущество антисептиков на основе этилового спирта по сравнению с антисептиками на основе изопропилового спирта состоит в том, что они действуют на (способны уничтожить)
1) кишечную палочку;
2) золотистый стафилококк;
3) синегнойную палочку;
4) ротавирус и аденовирус.
23. Резидентная флора - это
1) микроорганизмы, постоянно живущие и размножающиеся на коже человека (это наша собственная микрофлора);
2) микроорганизмы, приобретенные медицинским персоналом в процессе работы в результате контакта с пациентами или контаминированными объектами окружающей среды лпу;
3) микроорганизмы, устойчивые к дезинфектантам;
4) микроорганизмы, устойчивые к антибиотикам.
24. Какие из перечисленных вирусов относится к безоболочечным, на которые практически не действуют антисептики на основе изопропилового спирта?
1) вирус герпесной инфекции;
2) вирус гриппа;
3) энтеровирус;
4) вирус кори.
25. Основной фактор распространения инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи
1) руки пациентов;
2) руки медицинского персонала;
3) уборочный инвентарь;
4) предметы для ухода за больными.
26. Инструктаж по технике безопасности работы в лаборатории должен проводиться не реже 1 раза в
1) месяц;
2) 0,5 год;
3) 1 год;
4) периодичность не нормирована.
27. Профилактика в медицине направлена на
1) выявление причин заболеваний;
2) выявление причин заболеваний, их искоренение или ослабление;
3) улучшение условий труда и отдыха;
4) закаливание организма и предупреждение инфекционных заболеваний с помощью прививок.
28. Какой метод используют для окраски соединительной ткани
1) шик реакция;
2) ван гизон;
3) альциановый синий;
4) по граму.
29. Какой метод используют для окраски бактерий:
1) по перлсу;
2) ван гизон;
3) по граму;
4) конго красный.
30. Укажите процент раствора формалина, применяемого для фиксации материала:
1) 40%;
2) 30%;
3) 10%;
4) 5%.
31. Назовите простую фиксирующую жидкость, применяемую для фиксации:
1) формалин;
2) хлороформ;
3) жидкость буэна;
4) вода.
32. Для контроля качества абсолютного спирта используется:
1) спиртометр;
2) формалин;
3) хлороформ;
4) глицерин.
33. Назовите заливочные среды, применяемые для получения гонких срезов:
1) парафин;
2) целлоидин;
3) термопластические массы;
4) желатин.
34. Укажите толщину тонких срезов:
1) до 1 мкм;
2) до 6 мкм;
3) до 10 мкм;
4) до 10 нм.
35. Хранение материала, помещенного в фиксирующую жидкость, осуществляется:
1) при комнатной температуре;
2) замораживание;
3) охлаждение;
4) не имеет значение.
36. Температура плавления твердого парафина:
1) 38-46 гр.с;
2) 48-56 гр.с;
3) 58-66 гр.с;
4) 68-76 гр.с
37. Хлороформ можно заменить:
1) ацетоном;
2) ксилолом;
3) этанолом;
4) толуолом.
38. К ядерным красителям не относится:
1) гематоксилин;
2) кармин;
3) фуксин;
4) сок черники.
39. Выбрать компонент красящей смеси по Ван-Гизону:
1) анилин;
2) эозин;
3) кармин;
4) пикрофуксин.
40. Срезы, окрашенные Суданом, можно заключать в следующие среды:
1) полистерол;
2) глицерин;
3) канадский бальзам;
4) не заключать.
41. Амилоид при окраске конго-красным окрашивается в цвет:
1) зеленый;
2) синий;
3) красный;
4) фиолетовый.
42. Норма расхода спирта на один объект биопсии:
1) 10 г;
2) 20 г;
3) 30 г;
4) 40 г.
43. Укажите норму расхода спирта на одно вскрытие с гистологической обработкой взятых кусочков:
1) 30 г;
2) 130 г;
3) 230 г;
4) 330 г.
44. Ответственность за правильность оформления врачебного свидетельства о смерти несет:
1) заведующий отделением;
2) врач, подписавший свидетельство о смерти;
3) лаборант, заполняющий свидетельство о смерти;
4) медицинский регистратор.
45. Гистологическому исследованию подлежат:
1) транссудаты; экссудаты; содержимое кистозных полостей
2) промывные среды; секреты желез
3) ткани, иссеченные во время операции; ткани, полученные при родах и абортах; соскобы
4) кровь.
46. Приготовьте 1 литр 10% р-ра формалина:
1) 100 мл 40% формалина + 900 мл воды;
2) 50 мл 40% формалина + 950 мл воды;
3) 10 мл 40% формалина + 990 мл воды;
4) 90 мл 40% формалина + 910 мл воды.
47. Чем обезжириваются стекла:
1) спирт 96%;
2) формалин;
3) ксилол;
4) спирт + ксилол.
48. Нож спинкой вперед ведется при:
1) заточке;
2) правке;
3) резке;
4) чистке.
49. Перечислите способы специальной окраски нервной ткани:
1) шик-реакция;
2) импрегнация серебром (по гольджи);
3) конгорот;
4) пикрофуксин.
50. Укажите сроки хранения гистологическою препарата с часто встречающейся патологией:
1) 1 месяц;
2) 6 месяцев;
3) 12 месяцев;
4) 18 месяцев.
51. Методы выявления нуклеиновых кислот:
1) метод косса;
2) реакция браше;
3) реакция фельгена;
4) реакция перлса.
52. Красители для выявления жира в ткани:
1) раствор люголя;
2) судан;
3) толуидиновый синий;
4) гематоксилин.
53. Результат окраски гематоксилином и эозином:
1) ядро красное, цитоплазма желтая;
2) ядро синее, цитоплазма розовая;
3) ядро розовое, цитоплазма синяя;
4) ядро и цитоплазма синие.
54. Соотношение объема фиксирующего агента и тканевого образца должно быть:
1) 15:1;
2) 10:1;
3) 20:1;
4) 5:1.
55. Оптимальный угол наклона микротомного ножа в санном микротоме:
1) 13-15 гр;
2) 7-9 гр;
3) 25-30 гр;
4) 1-6 гр.
56. Оптимальный угол наклона микротомного ножа в ротационном микротоме:
1) 7-9 гр;
2) 13-15 гр;
3) 25-30 гр;
4) 18-22 гр.
57. Если парафин при резании материала крошится, необходимо:
1) смочить блок спиртом;
2) изменить угол наклона ножа;
3) перезалить объект;
4) попросить хирурга прислать дополнительный фрагмент ткани.
58. Если ткань отделяется в блоке от парафина, необходимо:
1) перезалить блок;
2) изменить угол наклона ножа;
3) перед получением среза подышать на блок;
4) смочить блок спиртом.
59. Если срез прилипает к ножу, необходимо:
1) подышать на блок;
2) смочить блок спиртом;
3) изменить угол наклона ножа;
4) перезалить блок.
60. К причинам появления полос на срезах относятся все, кроме:
1) наличие зазубрин на ноже;
2) в парафине плотные включения;
3) наличие в ткани солей кальция;
4) плохая проводка материала.
61. Аппараты для проводки тканей бывают:
1) осмотического типа;
2) вакуумного типа;
3) кислородного типа;
4) смешанного типа.
62. К простым фиксаторам не относится:
1) метанол;
2) ацетон;
3) жидкость карнуа;
4) формалин.
63. Выберите среду для заключения парафиновых срезов:
1) парафин;
2) полистерол;
3) воск;
4) желатин.
64. Укажите уровни исследования патологической анатомии:
1) тканевой;
2) клиникоморфологический;
3) субклеточный;
4) все перечисленное верно.
65. Макроскопический метод выявления ишемии миокарда:
1) шик-реакция;
2) теллуртовая проба;
3) проба с солями тетразолия;
4) реакция гримелиуса.
66. Назовите реактив для выявления амилоида:
1) желтый, зеленый;
2) пикрофуксиновая смесь;
3) черный;
4) конгорот.
67. С какой целью используют метод окраски по Граму
1) выявления helicobacter pylori;
2) выявления амилоида;
3) дифференциация грамположительных и грамотрицательных бактерий;
4) дифференциация гладкомышечной ткани от соединительной.
68. Назовите красители для выявления жира:
1) желатин, глицерин;
2) полистерол, бальзам;
3) раствор люголя;
4) судан iii, iv.
69. Сложный фиксатор:
1) жидкость карнуа;
2) ацетон;
3) формалин;
4) метанол.
70. Если кусочек исследуемого материала подсох на воздухе, необходимо сделать:
1) положить в физ.раствор;
2) положить в спирт;
3) положить в дистиллированную воду;
4) материал испорчен, выбросить.
71. Декальцинированная жидкость:
1) азотная кислота;
2) абсолютный спирт;
3) хлороформ;
4) трилон б.
72. Результат реакции выявления железа (цвет железа):
1) красный, темно-красный;
2) темно-синий, голубой;
3) черный, серый;
4) розовый, малиновый.
73. Метод для выявления нуклеиновых кислот:
1) метод косса;
2) реакция браше;
3) галлоцианин-хромовокислые квасцы;
4) метод бильшовского.
74. Фуксином окрашивают волокна:
1) коллагеновые;
2) эластические;
3) ретикулярные;
4) все перечисленные.
75. Укажите компонент раствора Люголя:
1) сафранин;
2) кристаллический йод;
3) толуидиновый синий;
4) водный голубой.
76. Гематоксилин, используемый для окраски по Ван-Гизону:
1) гематоксилин каррачи;
2) гематоксилин вейгерта;
3) гематоксилин эрлиха;
4) гематоксилин майера.
77. Эластические волокна окрашиваются фуксиленом в цвет:
1) зеленый;
2) темно-синий;
3) желтый;
4) не окрашиваются.
78. Укажите микротомы, где режутся парафиновые блоки:
1) лазерный;
2) роторный;
3) замораживающий;
4) ультратом.
79. Для резки парафиновых срезов используют следующие марки ножей:
1) а;
2) б;
3) с;
4) x.
80. О хорошо проведенном обезвоживании ткани свидетельствует:
1) появление мути при переносе объекта из спирта в ксилол;
2) отсутствие мути;
3) почернение кусочков;
4) появление белого облачка в ксилоле после спирта.
81. Парафин растворяется в:
1) спирте;
2) соляной кислоте;
3) ксилоле;
4) серной кислоте.
82. Дезинфекция - это метод уничтожения:
1) патогенных форм;
2) споровых форм;
3) всех микроорганизмов;
4) бактерий.
83. Режим дезинфекции при кипячении:
1) в дистиллированной воде 15 минут от закипания;
2) в дистиллированной воде 30 минут от закипания;
3) в дистиллированной воде 45 минут от закипания;
4) в дистиллированной воде 60 минут от закипания.
84. Стерилизация - это способ:
1) уничтожения патогенных микробов;
2) уничтожения непатогенных микробов;
3) уничтожения всех форм микробов;
4) уничтожение вирусов.
85. Укажите режим стерилизации парового стерилизатора:
1) 132 гр.с - 2.2 атм. - 20 минут;
2) 120 гр.с - 1,1 атм. - 45 минут;
3) 132 гр.с - 1.1 атм. - 45 минут;
4) 120 гр.с - 1,1 атм. - 20 минут.
86. Действия медработника при повреждении кожных покровов:
1) снять перчатки, вымыть руки водой с мылом под проточной водой, обработать руки 70% спиртом, смазать ранку 5% раствором йода;
2) снять перчатки, выдавить кровь из ранки. вымыть руки водой с мылом под проточной водой, обработать руки 70% спиртом, смазать ранку 5% раствором йода;
3) выдавить кровь из ранки, промыть водой и обработать спиртовым раствором бриллиантовой зелени;
4) обработать 3% раствором хлорамина.
87. Риск инфицирования при проколе контаминированной иглой составляет:
1) от 0,01 % до 1,0 %;
2) 50%;
3) 25%;
4) 100%.
88. Действия медработника при попадании биологической жидкости на слизистую глаза:
1) промыть слизистую большим количеством воды, затем закапать 20% раствор сульфацила натрия;
2) обработать слизистую 20% р-ром сульфацила натрия;
3) промыть слизистую большим количеством воды;
4) промыть слизистую большим количеством 3% самаровкой.
89. Продолжительность периода клинической смерти:
1) 10 минут;
2) 3-5 минут;
3) 15-20 минут;
4) 20-45 минут.
90. Реанимационные мероприятия с целью выведения пострадавшего из состояния клинической смерти:
1) введение в/в сердечных и сосудистых средств;
2) восстановление проходимости дыхательных путей, искусственное дыхание, закрытый массаж сердца;
3) согревание пострадавшего, введение в/в сердечных и сосудистых средств, введение в/в 5 мл 10% раствора хлорида кальция;
4) восстановление проходимости дыхательных путей, искусственное дыхание, открытый массаж сердца.
91. При проведении реакции на выявления железа соблюдают следующие условия
1) использование дистиллированной воды, чистая стеклянная посуда;
2) использование водопроводной воды, чистая посуда;
3) чистая стеклянная посуда;
4) использование дистиллированной воды.
92. Результат окраски по Перлсу
1) трехвалентное железо – синие, ядра – желтые;
2) трехвалентное железо - синие, ядра – красные;
3) трехвалентное железо – зеленое, ядра – желтые;
4) трехвалентное железо – красное, ядра – черные.
93. Метод для определения слизи
1) судан iii;
2) судан черный;
3) альциановый синий;
4) конгорот.
94. Укажите вещества, которые выявляются с помощью специальной окраски Судан III
1) жиры;
2) белки;
3) углеводы;
4) нуклеопротеиды.
95. Клеточными элементами, разрушающими костную ткань являются
1) остеоциты;
2) остеобласты;
3) хондрокласты;
4) остеокласты.
96. Липиды исследуют на
1) парафиновых срезах;
2) замороженных срезах;
3) целлоидиновых срезах;
4) термопластические массы.
97. Метод специальной окраски Конго-красный используют для выявления
1) микобактерии туберкулеза;
2) дрожжевых клеток;
3) эластических волокон;
4) амилоида.
98. Основной реактив, используемый при специальной окраске Конго-красный:
1) фуксин;
2) эозин;
3) конгорот;
4) реактив шиффа.
99. Метод специальной окраски Циль-Нильсен используют для выявления
1) нервной ткани;
2) микобактерий туберкулеза;
3) мукополисахаридов;
4) гликогена.
100. Окрашивание гистологического препарата производится с целью
1) повысить разрешающую способность микроскопа;
2) обеспечить сохранность гистопрепарата;
3) обеспечить контрастность гистологических объектов;
4) отделить компоненты внутриклеточных структур.
101. Тинкториальные свойства — это способность гистологических структур окрашиваться:
1) в разный цвет;
2) кислыми красителями;
3) основными красителями;
4) красителями.
102. Видами морфологического атипизма доброкачественных опухолей являются:
1) тканевой;
2) мышечный;
3) органный;
4) ядерный.
103. Ретикулярная ткань входит в состав
1) сухожилия;
2) органов кроветворения и иммуногенеза;
3) кожи;
4) скелетных мышц.
104. Информированное добровольное согласие человека для любого медицинского вмешательства
1) обязательно;
2) желательно;
3) не обязательно;
4) зависит от вида вмешательства.
105. Морфологический признак эластических волокон
1) не содержат аморфный компонент;
2) не ветвятся и не анастомозируют;
3) тонкие нитевидные;
4) толстые лентовидные.
106. Согласно морфофункциональной классификации в группу однослойных эпителиев входит
1) однорядный;
2) ороговевающий;
3) переходный;
4) многоклеточный.
107. Согласно морфофункциональной классификации в группу многослойных эпителиев входят
1) ороговевающий;
2) переходный;
3) неороговевающий;
4) все ответы верны.
108. Основными признаками рыхлой волокнистой соединительной ткани являются
1) многообразие клеток;
2) преобладание основного вещества;
3) неупорядоченность волокон;
4) все ответы верны.
109. Номер приказа РФ от 24.03.2016г. «О правилах проведения патологоанатомических исследований»:
1) 179н;
2) 350н;
3) 354н;
4) 136н.
110. Цель фиксации материала:
1) стабилизация тканевых структур, предотвращение ферментативного распада тканей;
2) удаление воды из тканей;
3) удаление солей кальция;
4) получение тонких равномерных срезов с исследуемого объекта.
111. Продолжительность фиксации определяется
1) свойствами фиксатора и размерами фиксируемого кусочка;
2) свойствами фиксатора;
3) размерами фиксируемого кусочка;
4) окружающей температурой.
112. Универсальные меры безопасности акцентируют внимание персонала на
1) средствах индивидуальной защиты;
2) медикаментах и медицинском оборудовании;
3) пациентах;
4) средствах дезинфекции и стерилизации.
113. В опухоли различают
1) секреторную область;
2) протоки;
3) строму;
4) верхушку.
114. Характеристика доброкачественной опухоли
1) даёт метастазы;
2) растет медленно;
3) растёт быстро;
4) характерен клеточный атипизм.
115. Характеристика злокачественной опухоли:
1) даёт метастазы;
2) растет медленно;
3) не характерен тканевой атипизм;
4) все ответы верны.
116. Характерным исходом продуктивного воспаления является
1) склероз;
2) мумификация;
3) расплавление;
4) изъязвление.
117. Пример компенсаторной гипертрофии
1) гипертрофия сердца при пороках клапанов;
2) гипертрофия беременной матки;
3) гипертрофия молочных желёз при лактации;
4) гинекомастия.
118. При биопсии «родинки» - гнезда светлых клеток с гранулами коричневого пигмента не дающего реакцию на железо, это опухоль из
1) меланинобразующей ткани;
2) эпителия;
3) нервной ткани;
4) мышечной ткани.
119. Цель фиксации ткани — это
1) сохранить прижизненную структуру;
2) вызвать коагуляцию клеточного содержимого;
3) сделать ткань хрупкой, ломкой;
4) способствовать сморщиванию или набуханию ткани.
120. Объём фиксатора должен превышать объём фиксируемого материала в
1) 10 раз;
2) 20 раз;
3) 50 раз;
4) 100 раз.
121. Гиперплазия - это
1) увеличение массы тканей какого-то органа;
2) увеличение количества клеток;
3) уменьшение объёма тканей;
4) переход одного вида ткани в другой.
122. Норма расхода спирта на одно вскрытие с гистологической обработкой взятых кусочков
1) 30 г.;
2) 130 г.;
3) 230 г.;
4) 330 г.
123. Алгоритм изготовления и окрашивания замороженных срезов
1) заморозка, резка, фиксация, обезвоживание, окраска, просветление, заключение под покровное стекло;
2) обезвоживание, окраска, просветление, заключение под покровное стекло;
3) окраска, просветление, обезвоживание, заключение под покровное стекло;
4) просветление, обезвоживание, окраска, заключение под покровное стекло.
124. Регрессивный тип окрашивания - это
1) первоначальное перекрашивание структур ткани с последующей дифференцировкой нужного уровня;
2) окрашивание одним красителем;
3) процесс, идущий до тех пор, пока не достигается интенсивное проникновение красителя в ткань;
4) окрашивание после предварительной подготовки ткани.
125. Дисциплина, изучающая структуры определенных органов и их систем
1) общая гистология;
2) частная гистология;
3) гистологическая техника;
4) цитология.
126. Дисциплина, изучающая строение клетки
1) цитология;
2) общая гистология;
3) частная гистология;
4) гистологическая техника.
127. Результат окрашивания аргирофильных волокон в срезах
1) черный;
2) красный;
3) серый;
4) сиреневый.
128. Количество фиксирующей жидкости должна превышать объем фиксируемого материала в
1) 5 раз;
2) 10 раз;
3) 15 раз;
4) 20 раз.
129. Задача фиксации цитологических мазков
1) подготовка к утилизации;
2) подготовка к радиофотографическому исследованию;
3) изменение избирательности окрашивания;
4) сохранение строения клеток.
130. Сроки выполнения прижизненных патолого-анатомических исследований для биопсийного (операционного) материала, не требующего декальцинации и дополнительных окрасок составляет
1) не более 4-х рабочих дней;
2) не более 7-ми рабочих дней;
3) не более 10-ти рабочих дней;
4) не более 15-ти рабочих дней.
131. При фиксации в 96-градусном спирте толщина фиксируемого кусочка не должна превышать
1) 3-5 см;
2) 5-10 см;
3) 1 см;
4) 0,3-0,5 см.
132. Использованную фиксирующую жидкость:
1) употребляют повторно;
2) не употребляют повторно;
3) употребляют в течение 3-х дней;
4) употребляют в течение 2-х недель.
133. Процесс обезвоживания не производится перед
1) замораживанием;
2) заливкой в целлоидин;
3) заливкой в парафин и целлоидин;
4) заливкой в парафин.
134. Укажите причины неоднородности (беловатая в средней части) плоскости парафинового среза
1) большой угол наклона ножа;
2) заливка охлажденным парафином;
3) кусочек остыл при переносе в формочку;
4) недостаточное обезвоживание.
135. К простым фиксаторам относят
1) этиловый спирт 96%;
2) жидкость ценкера;
3) жидкость карнуа;
4) жидкость мюллера.
136. Цель обычного мытья рук
1) удаление и уничтожение транзиторной микрофлоры;
2) удаление и уничтожение транзиторной микрофлоры и снижение численности резидентной флоры;
3) уничтожение резидентной флоры;
4) удаление грязи и транзиторной микрофлоры.
137. Наиболее контаминированные участки кожи рук
1) кончики пальцев, околоногтевое и подногтевое пространство;
2) тыльная поверхность пальцев;
3) ладонная поверхность пальцев;
4) ладонная поверхность большого пальца.
138. Почему необходимо обрабатывать руки после снятия медицинских перчаток?
1) чтобы смыть перчаточную пудру;
2) если у перчаток нет внешних повреждений, это необязательно;
3) это устаревшее требование, не имеющее экспериментального обоснования;
4) даже новые перчатки имеют поры, проницаемые для некоторых вирусов.
139. Микроорганизмы, чаще всего высеваемые с рук санитарок, занимающихся уборкой помещений в отделениях стационара
1) протей;
2) кишечная палочка;
3) золотистый стафилококк;
4) синегнойная палочка.
140. Микроорганизмы, чаще всего высеваемые с рук санитарок, занимающихся уборкой помещений в отделениях стационара
1) протей;
2) кишечная палочка;
3) золотистый стафилококк;
4) синегнойная палочка.
141. Гигиену рук медицинских работников регламентирует
1) санпин 2.1.3.2630-10 "санитарно-эпидемиологические требования к гигиене рук медицинского персонала»;
2) санпин 2.1.3.2630-10 "санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность», раздел 1;
3) приказ минздрава россии от 02.03. 2010г. № 213 «мероприятия по совершенствованию гигиены рук медицинского персонала»;
4) санпин 2.1.3.2630-10 "санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность», раздел 12.
142. «Золотой стандарт» спиртового антисептика для обработки рук
1) 70% водный раствор этилового спирта;
2) 96% водный раствор этилового спирта;
3) 100% водный раствор этилового спирта;
4) 50% водный раствор этилового спирта.
143. Какие биологические жидкости наиболее опасны в эпидемиологическом отношении инфекции ВИЧ?
1) слюна;
2) кровь;
3) пот;
4) все ответы правильные.
144. Цель мытья рук водой с мылом
1) снижение количества микроорганизмов до безопасного уровня;
2) удаление загрязнений и снижения количества микроорганизмов путем механического удаления с поверхности кожи;
3) уничтожение всех микроорганизмов на поверхности кожи;
4) уход за кожей рук.
145. Из условий, влияющих на здоровье, наиболее значимым, согласно данным ВОЗ, является
1) наследственность;
2) здравоохранение;
3) образ жизни;
4) внешняя среда.
146. Согласно Федеральному закону от 21.11.2011 №323-ФЗ к видам медицинской помощи относится медицинская помощь
1) по врачебным специальностям;
2) амбулаторная, стационарная, стационарная дневная, вне медицинской организации;
3) экстренная, неотложная, плановая;
4) первичная медико-санитарная, скорая, специализированная, паллиативная.
147. Эффективность медицинской помощи – это
1) степень достижения конкретных результатов при оказании медицинской помощи при соответствующих ресурсных затратах;
2) улучшение функционирования организма пациента после проведения лечебных мероприятий;
3) степень экономии финансовых, материальных и трудовых ресурсов при оказании медицинской помощи;
4) строгое соблюдение стандартов медицинской помощи.
148. Экономика здравоохранения относится к блоку наук
1) прикладных экономических;
2) экономической теории;
3) специальных экономических;
4) отраслевых экономических.
149. Патологическое состояние -
1) является особым видом заболевания;
2) является начальным периодом болезни;
3) может возникнуть в результате ранее перенесенного заболевания;
4) является кратковременной необычной реакцией на внешние раздражители.
150. Патологическая реакция - это
1) кратковременная необычная реакция организма на какое-либо воздействие;
2) разновидность болезней;
3) необычный результат лабораторного анализа;
4) защитная реакция организма на неблагоприятное внешнее воздействие.
151. Заражение медработника при обслуживании ВИЧ – инфицированного возможно в случае:
1) при проведении инъекций, пункций и др. манипуляций;
2) при проведении инъекций – прокол кожи через перчатку, во время операций – порез руки;
3) попадание крови на слизистую глаз, носа или рта;
4) верны ответы б, в.
152. Назовите основные характерные черты ВИЧ – инфекции:
1) неблагоприятный исход заболевания, постоянная репликация вируса в организме, продолжительный субклинический период заболевания;
2) короткий субклинический период заболевания, относительно благоприятный исход заболевания;
3) прогрессирующее снижение иммунитета;
4) верны ответы а, в.
153. Пути передачи ВИЧ - инфекции
1) контактно- бытовой, воздушно-капельный;
2) алиментарный, контактный;
3) половой, парентеральный, вертикальный;
4) фекально - оральный, половой.
154. При уколе, порезе необходимо:
1) снять перчатки, промыть руки под проточной водой, место укола смазать йодом;
2) снять перчатки, промыть руки под проточной водой, заклеить бактерицидным лейкопластырем;
3) снять перчатки, промыть руки под проточной водой, выдавить из ранки 2-3 капли крови, обработать йодом, заклеить бактерицидным лейкопластырем;
4) снять перчатки, вымыть руки с мылом под проточной водой, обработать руки 70% этиловым спиртом, место прокола обработать 5% спиртовым раствором йода, заклеить бактерицидным лейкопластырем.
155. Регламентирующие документы, определяющие работу МО по ВИЧ/СПИД
1) Федеральный закон РФ от 30.03.1995г. № 38-ФЗ;
2) Санитарные правила СП 3.1.5.2826-10 от 11.01.2011 с изменениями от 21.07.2016 № 95;
3) Приказ МЗ РФ от 09.01. 2018г. № 1н;
4) Всё перечисленное верно.
156. Максимальный риск инфицирования при проколе контаминированной иглой составляет:
1) от 0,01% до 0,3%;
2) 30%;
3) 10%;
4) 2%.
157. Чаще подвержены риску медработники, соприкасающиеся с:
1) кровью и её компонентами, вагинальным секретом;
2) моча, кал, слюна, грудное молоко;
3) спермой, спинномозговой жидкостью;
4) верны ответы а, в.
158. При попадании крови на халат, одежду необходимо:
1) снять халат и сдать в стирку;
2) снять халат, свернуть загрязнённой стороной в внутрь, замочить в дез. растворе, выдержать экспозицию, сдать в стирку, кожу под халатом обработать 70% этиловым спиртом;
3) продолжить работать, в конце дня халат сменить;
4) снять халат, положить в жёлтый пакет для отходов класса Б.
159. Назовите отличия в обслуживании ВИЧ – инфицированного пациента при проведении парентеральной процедуры:
1) одноразовые: маски, халат, перчатки, очки|;
2) одеть двойные латексные перчатки, обработать ногтевые фаланги спиртовым раствором йода, выполнять процедуру в присутствии дублера;
3) дополнительно обработать руки для проведения хирургических вмешательств;
4) обслуживать ВИЧ - инфицированных могут только медработники со специальной подготовкой.
160. Содержимое укладки для профилактики парентеральных инфекций:
1) 5% спиртовой раствор йода, ватные шарики, спирт этиловый 95%, бинт марлевый стерильный;
2) 1% раствор марганцовокислого калия, 5% спиртовой раствор йода, спирт этиловый 70%, лейкопластырь, протаргол, запасные перчатки, бинт, ватные шарики;
3) спирт этиловый 70%, нашатырный спирт, сульфацил натрия 20%;
4) спирт этиловый 70%, 5% спиртовый раствор йода, салфетки марлевые стерильные, бактерицидный лейкопластырь, бинт марлевый стерильный.
Ответы: при возникновении сложностей обращайтесь к автору за помощью через Telegram или e-mail.
Если Вы уважаете наш труд и разделяете наши ценности (помощь медицинским работникам), если Вам хочется внести свой вклад в развитие нашего проекта, поддерживайте нас донатами: вносите свой посильный вклад в общее дело пожертвованиями и финансовой помощью. Чем больше у нас будет ресурсов, тем больше мы сделаем вместе для медицинских работников (Ваших коллег).
- Каждый тест проходится вручную
- Это колоссальный труд авторов
- Делаем все, чтобы сохранить Ваше время
Отправить ДОНАТ-благодарность с любого банка по СБП на Газпромбанк
![Газпром Газпром](assets/styles/img/gazprom-sbp.png)
- Каждый тест проходится вручную
- Это колоссальный труд авторов
- Делаем все, чтобы сохранить Ваше время
Отправить ДОНАТ-благодарность с любого банка по СБП на Газпромбанк
![Газпром Газпром](assets/styles/img/gazprom-sbp.png)