Тест с ответами по теме «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции»
Вашему вниманию представляется Тест с ответами по теме «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинских работников (врачи, медсестры и фармацевты). Тест с ответами по теме «Лабораторная диагностика дифтерийной инфекции» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинского персонала высшего и среднего звена (врачи, медицинские сестры и фармацевтические работники) позволяет успешнее подготовиться к итоговой аттестации и/или понять данную тему.
1. Corynebacterium diphtheriae представляют собой
1) грамотрицательные кокки;
2) грамотрицательные палочки;
3) грамположительные кокки;
4) грамположительные палочки;+
5) кислотоустойчивые палочки.
2. В течении какого временного интервала тампоны с патологическим материалом должны быть доставлены в бактериологическую лабораторию?
1) в течение 12 часов;
2) в течение 3 часов;+
3) в течение 5 часов;
4) в течение 8 часов;
5) в течение дня.
3. Для посева патологического материал дифтерию какое количество чашек первичного посева используется?
1) две чашки для посева материала из зева и носа;
2) одна чашка для посева материала из зева и носа;+
3) одна чашка для посева материала из ротовой полости;
4) по две чашки для посева материала из зева и носа;
5) три чашки для посева материала из зева, носа и ротовой полости.
4. Для проведения контроля качества питательных сред для первичного посева используют:
1) S.aureus № 25923;+
2) дикий штамм C.diphtheriae;
3) токсигенный штамм C.diphtheriae № 665;+
4) токсигенный штамм C.ulcerns «Соколов»;
5) токсигенный штамм C.ulcerns № 675.
5. Из каких эпитопов производится взятие материала при подозрении на дифтерию?
1) задняя стенка ротоглотки;
2) зев;+
3) кровь;
4) нос;+
5) ротовая полость.
6. Используемые варианты постановки пробы на токсигенность:
1) агглютинация на стекле с антитоксином;
2) иммуноферментный анализ с антитоксином;
3) кольцепреципитация с антитоксином;
4) реакция преципитации в агаре с помощью полосок с антитоксином;+
5) реакция преципитация в агаре с помощью дисков с антитоксином.+
7. Какая из перечисленных бактерий является возбудителем дифтерии?
1) C.diphtheriae нетоксигенные;
2) C.diphtheriae токсигенные;+
3) C.pseudodiphtheriticum;
4) C.pseudotuberculosis;
5) C.ulcerans.
8. Какие диагностические тесты ставятся для идентификации возбудителя дифтерии?
1) определение токсигенности, каталазы, оксидазы, редукция глюкозы, мальтозы, сахарозы;
2) определение токсигенности, цистиназы, оксидазы, редукция глюкозы, мальтозы, сахарозы, уреазы;
3) определение токсигенности, цистиназы, уреазы, нитратредуктазы, редукция глюкозы, сахарозы, крахмала;+
4) определение цистиназы, нитратредуктазы, каталазы, оксидазы, редукция глюкозы, мальтозы, фруктозы;
5) определение цистиназы, уреазы, оксидазы, редукция глюкозы, мальтозы, сахарозы, фруктозы.
9. Какие из перечисленных бактерий являются возбудителями дифтериеподобных заболеваний?
1) C.diphtheriae нетоксигенные;
2) C.diphtheriae токсигенные;
3) C.pseudodiphtheriticum;
4) C.pseudotuberculosis токсигенные;+
5) C.ulcerans токсигенные.+
10. Какие колонии считаются «подозрительными» на дифтерийные?
1) серо-черного или черного цвета («мокрый асфальт»), гладкие или имеющие радиальную исчерченность («маргаритка»), суховаты (если дотронуться петлей до колонии - «трескается, крошится»);+
2) серо-черного или черного цвета, гладкие, вязкой консистенции, суховаты (плохо снимаются с поверхности агара);
3) серо-черного цвета, морщинистые, суховатые (если дотронуться петлей до колонии – «трескается, крошится»);
4) серого цвета, блестящие, маслянистые;
5) серого цвета, гладкие или имеющие радиальную исчерченность («маргаритка»), маслянистые.
11. Какие критерии используют при проведении контроля качества для оценки ростовых свойств сред первичного посева?
1) вхожесть культуры;+
2) высеваемость культуры;
3) ингибирующие свойства;+
4) интенсивность роста;+
5) культурально-морфологические свойства.+
12. Какие питательные среды используются для первичного посева патологического материала на дифтерию?
1) Борде-Жангу;
2) Клауберга II;+
3) коринебакагар;+
4) кровяно-теллуритовые среды;+
5) мясо-пептонный агар.
13. Какие тесты идентификации ставят с «подозрительными» колониями?
1) определение каталазы;
2) определение нитратредуктазы;
3) определение сахаролитических свойств;
4) определение токсигенности и цистиназы;+
5) определение уреазы.
14. Какой диагностический препарат используют в пробе на токсигенность?
1) дифтерийный анатоксин;
2) дифтерийный антитоксин;+
3) дифтерийный токсин;
4) противодифтерийную сыворотку;
5) противодифтерийный иммуноглобулин.
15. Какой диагностический тест является определяющим при выделении возбудителя дифтерийной инфекции?
1) определение наличие уреазы;
2) определение нитратредуктазной активности;
3) определение сахаролитических свойств;
4) определение токсигенности;+
5) определение фермента цистиназы.
16. Какой метод лабораторной диагностики используется для подтверждения диагноза дифтерия?
1) бактериологический;+
2) микробиологический;
3) микроскопический;
4) молекулярно-генетический;
5) серологический.
17. Какой метод лежит в основе определения токсигенности возбудителя?
1) иммуноферментный анализ;
2) реакция агглютинация;
3) реакция непрямой гемагглютинации;
4) реакция преципитации в агаре;+
5) реакция прямой гемагглютинации.
18. Какой ряд Гисса ставится для определения сахаролитических свойств C.diphtheriae?
1) глюкоза;+
2) крахмал;+
3) мальтоза;
4) сахароза;+
5) фруктоза.
19. Какой штамм используется в качестве контрольного в пробе на токсигенность?
1) C.diphtheriae нетоксигенный № 65;
2) C.diphtheriae слаботоксигенный №670;
3) C.diphtheriae токсигенный № 665;+
4) C.ulcerans нетоксигенный № 765;
5) C.ulcerans токсигенный № 675.
20. Контроль качества как и каких реагентов и реактивов проводят в рамках проведения бактериологической диагностики дифтерии?
1) каждая варка питательных сред первичного посева, пробы Пизу, среды на токсигенность, нитратного бульона, реактивов А и В, сахаров;
2) каждая партия крови, сыворотки крупного рогатого скота, антитоксина;+
3) каждая серия питательных сред первичного посева;
4) каждая серия питательных сред первичного посева, пробы Пизу, среды на токсигенность;
5) каждая серия питательных сред первичного посева, пробы Пизу, среды на токсигенность, нитратного бульона, реактивов А и В, сахаров.+
21. На какие сутки производится выдача самого позднего бактериологического ответа?
1) на вторые сутки;
2) на первые сутки;
3) на пятые сутки;+
4) на третьи сутки;
5) на четвертые сутки.
22. На какие сутки производится выдача самого раннего бактериологического ответа?
1) на вторые сутки;
2) на первые сутки;
3) на пятые сутки;
4) на третьи сутки;+
5) на четвертые сутки.
23. На какие сутки производится учет пробы Пизу?
1) через 24 часа;+
2) через 24 – 48 часов;
3) через 48 часов;
4) через 48 – 72 часа;
5) через 72 часа.
24. На какие сутки производится учет пробы на токсигенность?
1) через 24 часа;
2) через 24 – 48 часов;+
3) через 48 часов;
4) через 48 – 72 часа;
5) через 72 часа.
25. На какие сутки производится учет роста на средах первичного посева?
1) через 24 часа;
2) через 24 – 48 часов;+
3) через 48 – 72 часа;
4) через 72 – 96 часов;
5) через 96 – 120 часов.
26. Основной источник инфекции при инфицировании Corynebacterium pseudotuberculosis
1) бактерионоситель;
2) больной;
3) больной или бактерионоситель;
4) животные;+
5) предметы окружающей среды.
27. Основной источник инфекции при инфицировании Corynebacterium ulcerans
1) бактерионоситель;
2) больной;
3) больной или бактерионоситель;
4) животные;+
5) предметы окружающей среды.
28. По какому критерию дифференцируются C.diphtheriae биовары гравис и митис?
1) галактоза;
2) глюкоза;
3) крахмал;+
4) мальтоза;
5) сахароза.
29. Положительный результат в пробе на токсигенность
1) выпадение осадка (агглютинатов) в виде хлопьев;
2) изменение цвета под действием фермента;
3) образование гемолиза;
4) образование усов преципитации;+
5) появление свечения.
30. Сколько тампонов используется для взятия патологического материала на дифтерию?
1) два;+
2) один;
3) пять;
4) три;
5) четыре.
31. Что может использоваться для взятия материала?
1) влажные лабораторно приготовленные тампоны;
2) коммерческие транспортные среды с тампоном;
3) лабораторно приготовленные транспортные среды с тампоном;
4) сухие коммерческие тампоны;+
5) сухие лабораторно приготовленные тампоны.+
32. Что является положительным результатом при определении цистиназной активности?
1) образование коричневого облачка по поверхности агара;
2) образование коричневого облачка по ходу укола;+
3) образование помутнения по поверхности агара;
4) образование помутнения по ходу укола в агар;
5) появление диффузного роста в агаре.
Специальности для предварительного и итогового тестирования:
Бактериология, Инфекционные болезни, Клиническая лабораторная диагностика, Медицинская микробиология.
Если Вы уважаете наш труд и разделяете наши ценности (помощь медицинским работникам), если Вам хочется внести свой вклад в развитие нашего проекта, поддерживайте нас донатами: вносите свой посильный вклад в общее дело пожертвованиями и финансовой помощью. Чем больше у нас будет ресурсов, тем больше мы сделаем вместе для медицинских работников (Ваших коллег).
- Каждый тест проходится вручную
- Это колоссальный труд авторов
- Делаем все, чтобы сохранить Ваше время
Отправить ДОНАТ-благодарность с любого банка по СБП на ЮМани Банк
