Тест с ответами по теме «Причины возникновения и возможные методы устранения артефициального окрашивания биологических тканей»
Вашему вниманию представляется Тест с ответами по теме «Причины возникновения и возможные методы устранения артефициального окрашивания биологических тканей» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинских работников (врачи, медсестры и фармацевты). Тест с ответами по теме «Причины возникновения и возможные методы устранения артефициального окрашивания биологических тканей» в рамках программы НМО: непрерывного медицинского образования для медицинского персонала высшего и среднего звена (врачи, медицинские сестры и фармацевтические работники) позволяет успешнее подготовиться к итоговой аттестации и/или понять данную тему.
1. Артефакты всегда возникают
1) из-за некачественных реактивов;
2) по вине исследователя (лаборанта);+
3) по вине лабораторного оборудования;
4) спонтанно без видимой причины.
2. Вне зависимости от прочих условий, сильнее всего уменьшается в объеме при проводке ткань
1) богатая аморфным межклеточным веществом;
2) богатая белком;
3) богатая волокнами различных видов;
4) богатая жирами;+
5) богатая углеводами.
3. Все артефакты, возникающие на этапе вырезки материала
1) исправляются во время фиксации материала;
2) могут быть исправлены во время окраски;
3) могут быть исправлены во время проводки;
4) неустранимы.+
4. Зона гемолиза эритроцитов в центре кусочка исследуемого материала (среза) наиболее вероятно говорит о
1) использовании забуференного формалина;
2) нарушении правил вырезки материала;
3) недостаточном времени фиксации;+
4) ополаскивании в воде кусочков тканей перед погружением в фиксатор.
5. Из всего нижеперечисленного неустранимым артефактом является
1) выцветание препарата;+
2) неполное обезвоживание препарата перед заключением;
3) образование пузырей под покровным стеклом;
4) растрескивание монтирующей среды.
6. Инородные волокнистые структуры растительного происхождения в материале наиболее вероятно являются
1) фрагментами перевязочного материала;+
2) фрагментами шовного материала;
3) фрагментами эндопротезов.
7. Использование кислого формалина приводит к
1) вымыванию липидов из клеток;
2) вымыванию углеводов из клеток;
3) появлению формалинового осадка;+
4) разрыхлению тканей;
5) сильному обезвоживанию материала.
8. Каким способом можно предотвратить поступление воздуха под покровное стекло?
1) использовать покровные стекла большего размера;
2) нанести по его краям более вязкую монтирующую среду;
3) тщательно обезжиривать покровные стекла;+
4) установить на него грузик весом 20-30 гр.
9. Контаминация (перенос фрагментов тканей ножом во время микротомии) чаще всего может быть вызван
1) «длинным» протоколом проводки;
2) загрязнением реагентов при проводке;+
3) недостаточной фиксацией материала;
4) недостаточным уплотнением материала;
5) продолжительной фиксацией материала.
10. Локальная (очаговая) механическая деформация образца исследуемого материала при его проводке может быть вызвана
1) его уплотнением при обезжиривании;
2) его уплотнением при фиксации;
3) его уплотнении при пропитке парафином;
4) сдавлением крышкой кассеты;+
5) уплотнением при обезвоживании.
11. Недостаточное пропитывание ткани парафином может быть вызвано
1) воздействием высокой температуры во время проводки материала по спиртам;
2) воздействием низкой температуры во время проводки материала по спиртам;
3) выбран «короткий» протокол проводки по спиртам;+
4) ополаскиванием материала водой перед фиксацией;
5) перегреванием парафина.
12. О недостаточности декальцинации свидетельствует
1) выраженная полихроматофилия в срезе;
2) очаговая хромофобия в срезе;
3) сильная базофилия в срезе;+
4) сильная эозинофилия в срезе.
13. Об избыточности декальцинации свидетельствует
1) выраженная полихроматофилия в срезе;
2) очаговая хромофобия в срезе;
3) сильная базофилия в срезе;
4) сильная эозинофилия в срезе.+
14. Падение уровня красителя в емкости гистостейнера приводит
1) к автоматической остановке прибора;
2) к автоматическому удлинению времени окраски в этом красителе;
3) к неравномерному окрашиванию всех срезов в кассете;+
4) к перерасходу реактивов.
15. Поверхность блока после резки имеет жирный блеск и жирная на ощупь. Это вызвано
1) использованием «длинного» протокола проводки;
2) использованием некачественных реактивов;+
3) нарушением температурного режима пропитки парафином;
4) неправильной установкой лезвия при микротомировании;
5) плохой фиксацией материала.
16. Повторяющиеся параллельные полосы, в которых срез имеет разную толщину (чаттер), являются следствием
1) «короткой» проводки;
2) загрязнением парафина промежуточным растворителем;
3) использованием для резки ткани неподходящего типа лезвия;+
4) неправильной установки угла резки;
5) неправильной фиксации;
6) плохого пропитывания материала парафином.
17. Повышенная равномерная базофилия среза при окраске гематоксилин-эозином говорит о
1) загрязнении ксилола парафином;
2) загрязнении растворов спирта гематоксилином;
3) загрязнении эозина жиром;
4) истощении раствора гематоксилина;
5) истощении раствора эозина.+
18. Повышенная равномерная оксифилия среза при окраске гематоксилин-эозином говорит о
1) загрязнении ксилола парафином;
2) загрязнении растворов спирта гематоксилином;
3) загрязнении эозина жиром;
4) истощении раствора гематоксилина;+
5) истощении раствора эозина.
19. При плохом пропитывании материала парафином этот артефакт
1) может быть устранен непосредственно при микротомировании;
2) может быть устранен повторной проводкой и заливкой в парафин;+
3) неустраним;
4) требует повторно проводки по «короткому» протоколу;
5) требует повторной проводки при особых температурных условиях.
20. Признаком «перезревания», или «старения» раствора гематоксилина является
1) изменение оттенка окраски ядер;+
2) изменение степени базофилии;
3) изменение степени оксифилии;
4) появление зональной оксифилии;
5) появление очагов хромофобии.
21. Причиной зональной фиксации может быть
1) использование забуференного формалина;
2) короткое (недостаточное) время фиксации;
3) нарушение правил вырезки материала;
4) недостаточный объем фиксирующего раствора;
5) ополаскивание в воде кусочков тканей перед погружением в фиксатор;
6) плохое качество реагентов.+
22. Причиной периваскулярного и перицеллюларного отека может быть
1) использование забуференного формалина;
2) нарушение правил вырезки материала;
3) ополаскивание в воде кусочков тканей перед погружением в фиксатор;
4) повышенная концентрация формалина в фиксирующем растворе.+
23. Разноразмерные непрокрашенные очаги в срезе свидетельствуют о
1) «длинной» проводке этого кусочка ткани;
2) «короткой» проводке этого кусочка ткани;
3) недостаточной регидратации среза перед окраской;
4) недостаточном депарафинировании среза перед окраской;+
5) плохой фиксации материала.
24. Разноразмерные непрокрашенные очаги в срезе свидетельствуют о необходимости
1) «удлинении» проводки материала;
2) «укорочении» проводки материала;
3) перефиксации материала;
4) увеличения времени депарафинизации;+
5) увеличения времени регидратации среза перед окраской.
25. Растрескивание среза во время окраски может быть вызвано
1) его пересушиванием;+
2) его переувлажднением;
3) избыточной депарафинизацией;
4) избыточной регидрацией;
5) избыточной фиксацией.
26. Складки среза чаще всего образуются
1) при некачественном адгезивном покрытии стекла;
2) при плохой пропитке материала парафином;
3) при работе недостаточно острым лезвием;
4) при работе с большими кусочками, состоящими из разных по плотности тканей.+
27. Следы термического повреждения интраоперационного биопсийного материала могут быть вызваны
1) аспирационным насосом;
2) дефибриллятором;
3) инфузоматом;
4) криопроводником;
5) электрокоагулятором.+
28. Убрать формалиновый пигмент из среза можно обработкой среза насыщенным раствором
1) лимонной кислоты;
2) молибдата аммония;
3) молибденовой кислоты;
4) перманганата калия;
5) пикриновой кислоты.+
29. Повышенная равномерная оксифилия среза при окраске гематоксилин-эозином говорит о
1) загрязнении ксилола парафином;
2) загрязнении растворов спирта гематоксилином;
3) загрязнении эозина жиром;
4) необходимости увеличении времени окраски эозином раствора эозина;
5) необходимости увеличения времени окраски гематоксилином.+
30. Разноразмерные непрокрашенные очаги в срезе свидетельствуют о необходимости
1) «удлинении» проводки материала;
2) «укорочении» проводки материала;
3) замены ксилола или иного растворителя парафина;+
4) перефиксации материала;
5) увеличении времени регидратации среза перед окраской.
31. Недостаточное пропитывание ткани парафином может быть вызвано
1) воздействием высокой температуры во время проводки материала по спиртам;
2) воздействием низкой температуры во время проводки материала по спиртам;
3) ополаскиванием материала водой перед фиксацией;
4) плохой фиксацией материала.+
5) перегреванием парафина.
32. Причиной периваскулярного и перицеллюларного отека может быть
1) использование забуференного формалина;
2) нарушение правил вырезки материала;
3) ополаскивание в воде кусочков тканей перед погружением в фиксатор;
4) длительная фиксация.+
Специальность для предварительного и итогового тестирования:
Гистология.
Если Вы уважаете наш труд и разделяете наши ценности (помощь медицинским работникам), если Вам хочется внести свой вклад в развитие нашего проекта, поддерживайте нас донатами: вносите свой посильный вклад в общее дело пожертвованиями и финансовой помощью. Чем больше у нас будет ресурсов, тем больше мы сделаем вместе для медицинских работников (Ваших коллег).
- Каждый тест проходится вручную
- Это колоссальный труд авторов
- Делаем все, чтобы сохранить Ваше время
Отправить ДОНАТ-благодарность с любого банка по номеру карты на Тинькофф, Банк ВТБ, Альфа-банк, Газпромбанк или Сбер
- Каждый тест проходится вручную
- Это колоссальный труд авторов
- Делаем все, чтобы сохранить Ваше время
Отправить ДОНАТ-благодарность с любого банка по номеру карты на Тинькофф, Банк ВТБ, Альфа-банк, Газпромбанк или Сбер